科研产出
不同菜用甘薯品种茎尖代谢产物鉴定及途径分析
《中国农业科技导报(中英文) 》 2025 北大核心 CSCD
摘要：为研究代谢产物对甘薯生长发育的影响，以甘薯茎尖为研究对象，利用液相色谱-质谱联用（liquid chromatograph-mass spectrometer,LC-M）分离鉴定南宁菜、福菜薯18号、桂菜薯1号、桂菜薯2号、福薯7-6和台农71共6种菜用甘薯的差异代谢产物，探讨代谢途径的差异。结果表明，6个甘薯品种共得到差异代谢物4 210种，其中上调2 229种，下调1 981种，表明不同甘薯品种间存在显著差异。差异代谢物涉及的代谢途径主要包括初级胆汁酸生物合成、吲哚生物碱生物合成、黄酮和黄酮醇生物合成和色氨酸代谢，且不同品种间差异代谢物的积累和代谢途径也存在较大差异。因此，推测差异代谢物的积累和代谢途径的差异对甘薯品质起着关键作用。以上研究结果为进一步分析不同品种甘薯品质差异的机制奠定了基础。
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植物茎尖再生与遗传转化技术研究进展
《江苏农业科学 》 2024 北大核心
摘要：植物茎尖的分裂和分化能力强，是良好的植物再生和遗传转化外植体。建立简单高效的茎尖再生体系和遗传转化体系，在植物基因功能验证、性状改良、新品种培育等方面发挥重要作用，从而促进基因工程发展。本文介绍了茎尖分生组织的形态结构，并简述了影响茎尖干细胞分化的调节因子及其在茎尖中的调控机制，以期加深人们对植物茎尖发育调控的认识，为植物茎尖再生体系和遗传转化体系的建立提供理论基础。在此基础上，本文综述了外植体苗龄、茎尖处理方式、培养基、植物生长调节剂、温度等因素对植物茎尖再生体系的影响，并重点讨论和概述了当前影响植物茎尖遗传转化效率的主要原因，包括预培养、茎尖处理方式、侵染方式、菌液浓度及侵染时间、乙酰丁香酮(AS)浓度、共培养时间、筛选剂等因素。结果表明，对茎尖外植体进行适当预培养和处理、在侵染过程中辅助AS或超声波、选择合适的侵染菌液浓度和共培养时间有利于提高植物茎尖的遗传转化效率。在此基础上，本文进一步探讨了选择合适的基因转化方法、载体类型和优化载体元件提高遗传转化效率的可行性，发现在转化载体上添加发育调节因子是促进植物再生的一种有效策略，推测该方法在植物茎尖研究中具有应用潜力。此外，本文简述了基因编辑发展现状，总结了目前发育调节因子在基因编辑中的应用，并对目前遗传转化技术优化和应用的研究热点进行了讨论，对未来茎尖遗传转化技术的优化和应用进行了展望。
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甘蔗茎尖离体培养褐变影响因素及细胞区室结构分析
《广西植物 》 2016 北大核心 CSCD
摘要：该研究通过综合分析对甘蔗(ROC 22)茎尖离体培养褐变不同条件因素的影响以及褐变细胞区室结构的变化,探讨了甘蔗茎尖离体培养褐变的机理机制。结果表明:不同芽位茎尖诱导成活率具有明显差异,随着芽位的增加,诱导成活率不断降低;不同季节取芽对外植体茎尖总酚类物质含量无明显影响;但不同芽位及不同催芽天数,外植体芽的总多酚含量明显不同,随着催芽天数的增加,不同芽位的多酚含量呈现由低升高的趋势;蔗芽在培养4周时多酚含量较低,适宜进行采芽接种培养;从褐变甘蔗茎尖的解剖结构变化分析,褐变甘蔗茎尖细胞离体培养初期细胞核结构出现变形,线粒体有肿胀拉长,部分液泡膜开始分解;中后期质壁分离更为严重,胞质中出现大量溶酶体,线粒体等细胞器全分解,细胞膜、液泡膜、核膜、线粒体膜的双层膜结构出现破损和缺口;而正常发育的茎尖细胞,能基本保持细胞核的形态结构,只有少量的溶酶体出现。因此,可以推测细胞核和线粒体结构变形以及膜系统的大量破损是甘蔗茎尖培养褐变死亡的原因。
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马铃薯新品种桂农薯1号组培快繁研究
《南方农业学报 》 2014 CSCD
摘要：【目的】探索马铃薯新品种桂农薯1号组培快繁技术,为实现工厂化生产脱毒种薯提供技术支撑。【方法】采用茎尖培养脱毒法,以马铃薯顶芽为外植体,按不同灭菌时间进行单因子(3%NaClO和0.1%HgCl2)和双因子(75%酒精和0.1%HgCl2)消毒处理,再剥取0.3~0.7 mm茎尖接种到分别添加了不同浓度GA3、6-BA及6-BA和NAA的诱导培养基上诱导成苗。将诱导出的苗进行单腋芽切段快繁,并接种到添加有6-BA和PP333的单因子及双因子组合MS培养基中进行无菌苗继代增殖。【结果】75%酒精+0.1%HgCl2双因子灭菌较单因子3%NaClO和0.1%HgCl2效果好,污染率降至21.67%;茎尖诱导培养中,GA3和6-BA均能诱导茎尖萌芽,诱导趋势均先增后减,而以1.5 mg/L 6-BA和0.2 mg/L NAA配合,诱导率达53.67%;增殖壮苗阶段,0.1 mg/L PP333和2.5 mg/L 6-BA配合,增殖倍数达6.59倍,且苗长势好,茎粗壮、叶色正常。【结论】桂农薯1号外植体消毒最佳灭菌处理为:75%酒精2 min+0.1%HgCl211 min;最佳茎尖诱导配方为:MS+1.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA;适合继代增殖壮苗培养基为:MS+2.5 mg/L 6-BA+0.1 mg/L PP333。
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不同冷敏感型甘蔗茎尖Ca~(2+)和Ca~(2+)-ATP酶活性对低温的响应
《中国农业大学学报 》 2011 北大核心 CSCD
摘要：为了探明不同冷敏感型甘蔗品种茎尖Ca2+和Ca2+-ATP酶活性对低温胁迫的响应机制,本研究利用植物组织化学技术结合电子显微镜观察了2个不同冷敏感型甘蔗品种茎尖在低温胁迫前后Ca2+和Ca2+-ATP酶的变化规律。供试品种为桂糖28号(抗冷型)和园林6号(冷敏感型),在0℃条件下,分别处理0、2、4和6 d后切取茎尖进行组织化学定位,获得如下结果:1)低温胁迫前后桂糖28号形态和细胞结构变化不明显,但园林6号发生质壁分离现象,线粒体空泡化,细胞崩溃,组织水渍状明显;2)低温胁迫开始,2个甘蔗品种细胞质和细胞核Ca2+沉淀颗粒均增多,但随着低温胁迫时间的延长桂糖28号细胞质和细胞核Ca2+沉淀颗粒减少,并维持在一个低稳态水平,而园林6号细胞质和细胞核一直维持在高Ca2+浓度水平;3)低温对桂糖28号Ca2+-ATP酶活性与分布影响不大,其活性一直维持在较高水平,而园林6号Ca2+-ATP酶活性随着低温胁迫时间的延长而变弱。结果说明,低温条件下细胞质和细胞核Ca2+浓度增高是导致甘蔗茎尖细胞受伤害的重要原因,维持较高Ca2+-ATP酶活性有助于避免Ca2+中毒。
关键词： 甘蔗 茎尖 低温 Ca2+ Ca2+-ATPase
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甘蔗茎尖脱毒组织培养技术研究进展
《南方农业学报 》 2011 CSCD
摘要：文章从危害甘蔗的主要病害、甘蔗茎尖脱毒技术的发展及原理、甘蔗茎尖脱毒技术在生产上的应用、影响甘蔗茎尖脱毒效率的因素等方面介绍了甘蔗茎尖脱毒组培技术,提出培养基中植物生长调节剂的绝对浓度和配比、培养基的状态及如何解决培养中的酚污染等问题仍是甘蔗茎尖脱毒培养研究的热点。由于碱性孔雀绿、2,4-D、硫尿嘧啶、TS制剂(一种病毒钝化剂)等在其他作物组织培养脱毒培养中可以提高脱毒效率,因此,今后需研究这些化学制剂在甘蔗组培脱毒中的应用效果,并继续深入研究间歇浸没式反应器和植物无糖组培快繁技术等先进技术体系在甘蔗中的应用,运用新技术新设备提高甘蔗组培生产效率并降低生产成本。
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甘蔗茎尖原生分生组织区域化
《广西植物 》 2010 北大核心 CSCD
摘要：甘蔗茎尖原生分生组织是甘蔗地上部分一切形态组织的发源中心,通过对6个不同茎径甘蔗品种4个不同营养发育时期的茎尖原生分生组织显微和超微结构观察研究发现:甘蔗茎尖原生分生组织呈半卵型结构,明显分为原套原始细胞区、原体原始细胞区、周缘分生细胞区、髓分生区,其区域化符合原套-原体学说。原套原始细胞区为最外一层细胞,原套细胞之间胞间连丝丰富,而原套与原体细胞之间胞间连丝极少,细胞以垂周分裂为主,扩大原生分生组织表面积;原体位于原套下的分生组织的中央区域,细胞可以进行各个方向的分裂,不断增加体积,原体原始细胞区呈一个球体;周缘分生区位于原套、原体下方两侧,细胞活跃产生叶原基和原形成层细胞;髓分生区细胞位于原体下方周缘分生区内侧,细胞横向分裂纵向排列,使甘蔗茎伸长。
关键词： 甘蔗 茎尖 原生分生组织 原套原始细胞区 原体原始细胞区 周缘分生细胞区 髓分生区
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不同茎径甘蔗品种茎尖原生分生组织不同区域细胞分裂频率差异
《广西植物 》 2010 北大核心 CSCD
摘要：为探明甘蔗茎尖原生分生组织不同区域细胞分裂频率差异及其与茎径和株高的关系,对6个不同茎径品种5个不同生长时期的甘蔗茎尖进行石蜡连续纵切片显微观察,发现甘蔗茎尖原生分生组织各区域细胞分裂频率有明显差异:周缘分生区细胞(3.89%)>原体原始细胞区(2.67%)>髓分生区(1.46%)>原套原始细胞区(1.30%),以上差异均达到显著水平;各区域细胞分裂频率与甘蔗茎径均呈正相关,其中髓分生区和原套原始细胞区细胞分裂频率与茎径的相关系数较大,分别为r~2=0.856*、r~2=0.925*;各区域细胞分裂频率与甘蔗株高均呈负相关,其中原体原始细胞区细胞分裂频率与株高相关系数r~2=-0.728*。结果表明对原生分生组织各区域细胞分裂频率的精确量化,可以揭示甘蔗茎尖原生分生组织各区细胞与其特征的内在联系和不同区域细胞活动能力差异是甘蔗茎增粗的细胞学基础。
关键词： 甘蔗 茎尖 原生分生组织 细胞分裂频率 茎径 株高
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白花败酱组织培养及快速繁殖研究
《北方园艺 》 2009 北大核心
摘要：选取长势较好、无病害野生白花败酱植株的茎尖及茎段作为外植体进行组织培养,以MS为基本培养基,设计不同激素浓度配比试验,筛选最佳培养基配方。结果表明:采用0.1%HgCl2对外植体进行消毒,茎尖最佳消毒时间为10 min,茎段为15 min;最佳诱导培养基配方是MS+6-BA 3.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L,诱导率100%,增殖培养基MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA0.2 mg/L,增殖倍数7.8;生根壮苗培养基是MS+NAA 1 mg/L+马铃薯5%。
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